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Analyse d'échantillons biologiques : préparation, séparation, détection et validation

Environnement scientifique et technique de la formation

Institut de chimie organique et analytique - UMR 7311

RESPONSABLE

Reine NEHME

Maître de conférences

UMR 7311

LIEU

ORLEANS (45)

ORGANISATION

4 jours
De 4 à 10 stagiaires
TP en sous-groupes de 5 stagiaires maximum avec un intervenant par sous-groupe

COÛT PÉDAGOGIQUE

1800 Euros

A L'ISSUE DE LA FORMATION

Evaluation de la formation par les stagiaires
Envoi d'une attestation de formation

DATE DU STAGE

17421 : du mardi 21/11/2017 au vendredi 24/11/2017

Janvier Février Mars Avril
Mai Juin Juillet Août
Sept. Oct. Nov.
17421
Déc.

OBJECTIFS

- Acquérir une connaissance large des méthodes utilisées dans le domaine de la bioanalyse en fonction des propriétés des composés ciblés et de la matrice biologique analysée
- Maîtriser les techniques de prétraitement et d'extraction / concentration
- Etre capable de réaliser une séparation et une détection selon les exigences de quantification et d'identification structurale
- Savoir effectuer une validation par application de tests statistiques selon la réglementation en vigueur et les BPL (bonnes pratiques de laboratoire)

PUBLICS

Techniciens, ingénieurs et chercheurs chimistes, biologistes ou biochimistes, professionnels des milieux médicaux, pharmaceutiques et cosmétiques.

Afin d'adapter le programme aux attentes des stagiaires, un questionnaire téléchargeable ICI sera à renvoyer avant le début du stage.

PRÉREQUIS

Avoir une première expérience des techniques séparatives dans le domaine de la bioanalyse

PROGRAMME

1er jour
- Matrices biologiques, normes HSEQ et BPL ; notions de pharmacologie ; prétraitement de l'échantillon biologique (LLE, SPE, MIP, QUECHERS) (cours)
- Extraction (SPE, LLE) (atelier)
2ème jour
- Electrophorèse capillaire et chromatographie en phase gazeuse couplées à un spectromètre de masse (cours)
- Extraction (SPME, HS) et analyse GC-MS de métabolites dans le sérum (atelier)
3ème jour
- Chromatographie liquide : choix du mode et du détecteur. Spectrométrie de masse : sources d'ionisations (APCI, ESI, MALDI) ; analyseurs (trappe ionique, TOF) (cours)
- Extraction (SPE, LLE) et analyse HPLC-MS d'analytes d'intérêt biologique : choix de la source d'ionisation et de l'analyseur (atelier)
4ème jour
- Exemple d'études du métabolisme (ADME). Validation des méthodes d'analyse : tests statistiques (Cochran, Fisher, etc.) ; profil d'exactitude (cours)
- Validation des résultats obtenus par LC-MS (atelier)
- Table ronde : questions et discussions (1,5h)

Alternance de cours (50 %) et de travaux pratiques (50 %)

INTERVENANTS

B. Maunit, P. Morin (professeurs), A. Chartier (chercheuse), E. Lesellier, C. West, D. Da Silva, C. Dufresne, P. Favetta, B. Claude et R. Nehmé (maîtres de conférences)

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