Techniques de cultures primaires : De neurones hippocampiques et/ou corticaux, d’astrocytes et de Microglie chez le rongeur Présentiel

Dernière mise à jour : 18/01/2026

Unité de recherche

Description

Cours :

  • Rappel des notions de base en culture cellulaire 
  • Les grandes étapes de la culture cellulaire de la décongélation jusqu'au passage (trucs et astuces)
  • Les règles de bonnes pratiques de laboratoire en culture cellulaire
  • Étude des différents types de contamination, sources, risque…
  • Trouver des solutions efficaces en cas de contamination
  • Maîtriser les risques en cas de contamination
  • Savoir ce qu'il faut maintenir, améliorer et/ou changer dans sa pratique habituelle
  • Importance de la traçabilité à chaque étape de la culture cellulaire
  • Bilan, évaluation et questions

 

TP :

  • Visite du site
  • Analyse de l'ensemble des besoins en fonction de la culture pratiquée
  • Faire toutes les étapes de la culture cellulaire, de la décongélation jusqu'au passage et à la conservation dans le temps
  • Analyse de l'espace et identification des différentes sources de contamination possibles
  • Mise en situation (Décongélation, comptage des cellules, viabilité, clonage cellulaire en dilution limite…)
  • Observation et analyse de la qualité des préparations

 

TD :

  • Étude de cas

Objectifs de la formation

  • Prendre conscience des différents types de cultures (lignées-primaires…)
  • Maîtriser les bonnes pratiques en culture cellulaire
  • Savoir identifier les différents types de contaminations
  • Avoir les bons gestes et le savoir-faire en cas de complications techniques
  • Mettre en place une traçabilité à chaque étape de la culture cellulaire

Public visé

  • Chercheurs, ingénieurs et techniciens voulant maîtriser la culture de lignées cellulaires
  • Personnels amenés à former d'autres utilisateurs de lignées cellulaires

Prérequis

Avoir des notions de base en culture cellulaire.

Modalités pédagogiques

  • Jour 1 : matin : 3h de cours et 30min de TD / après-midi : 3h de TP et 30min de bilan et questions
  • Jour 2 : matin : 3h de cours et 30min de TD / après-midi : 3h de TP et 30min de bilan et évaluations

Moyens et supports pédagogiques

  • Supports papier.
  • PSM, incubateurs, bain-marie, centrifugeuse, microscope, cryo-conservateur.
  • Une salle avec système de vidéo-projection.
  • Aucun équipement de la part de l'apprenant n'est nécessaire.

Modalités d'évaluation et de suivi

Un suivi individualisé par des évaluations formatives est assuré. Une attestation de fin de formation est délivrée à la fin du parcours.

Formateurs

PG

POUPON Gwenola

Responsable scientifique 

Modalités tarifaires spécifiques

Nos formations sont exonérées de TVA. Elles bénéficient de remises volumes : - 5% pour 3-4 inscrits, - 10% pour 5-6 inscrits, et - 20% à partir de 7 personnes. Une réduction de 20% est appliquée pour les agents salariés du CNRS.

Informations sur l'accessibilité

Notre laboratoire est entièrement accessible aux personnes à mobilité réduite (PMR). Un accès adapté, des espaces de circulation et des sanitaires spécifiques sont à votre disposition pour garantir votre confort et votre autonomie. Pour toute information complémentaire, veuillez nous contacter.

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Prochaines Sessions

  • 12/03/26 9:00 → 13/03/26 17:00 INTER Nouveauté Présentiel
    IPMC – GP – VALBONNE - VALBONNE (06) 4 places restantes

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